최신연구결과(해외)

NeoplasmAutoimmune gastritis induces aberrant DNA methylation reflecting its carcinogenic potential

관리자
2022-12-18
조회수 2147

Takeuchi C, et al. J Gastroenterol 2022;57:144-155.


2022년 1월, J Gastroenterol에 실린 내용입니다. AIG와 관련하여 epigenetics (후생유전학) 관련 첫 report 입니다. AIG는 chronic inflammation 중 하나이며, H. pylori보다는 risk가 낮지만 gastric cancer 발생과 연관성이 있다고 알려져 있습니다.  비 정상적인 DNA 메틸화는 여러 형태의 cancer에서  중요한 원인으로 알려져 있으며, H. pylori 감염은 위 점막에서 비 정상적인 DNA 메틸화를 유도하는 것으로 알려져 있습니다. 대표적으로 NF-kB활성으로 인한 TET(TET gene methylcytosine dioxygenases) expression의 저하와 NO(nitric oxide)에 노출되면서 DNMT(DNA methyltransferases) activation의 증가가 비 정상적인 DNA 메틸화로 알려져 있습니다 (아래 Figure, Takeshima H, et al. Int J Invest 2020.). 아직 AIG에서는 이러한 DNA의 비 정상적인 메틸화가 일어나는지 여부는 알려져 있지 않기 때문에 H. pylori 감염이 없는 AIG 환자의 위 점막에서 DNA 메틸화가 유도되는지, 정상인과 H. pylori associated gastritis (HPG) 환자와 비교하였고, 위 점막의 염증 반응과 관련성을 알아보는 연구 입니다. 

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** 여기서, DNA 메틸화는 무엇이고 CpG는 무엇인지.. 에 대해 간략하게 정의하고 가겠습니다. 

CpG island: CG site라는 것은 말 그대로 C(cytosine)와 G(Guanine)가 일렬로 나란히 있는 서열을 말하며, CpG는 단순한 서열의 나열을 의미하는 것이 아니라 C와 G가 phosphate 하나로 연결된 부위를 의미합니다. 프로모터의 경우 대부분의 C는 메틸화가 되지 않습니다. 이는 발현을 위해서는 메틸화가 억제되어야 하기 때문입니다. 

메틸화: CpG의 C(cytosine) 염기에는 메틸기(-CH3)가 결합하여 있는데, 이를 ‘DNA 메틸화(Methylation)’라고 부릅니다. 이러한 DNA 메틸화 현상은 유전체의 각종 반복 서열 등에서 흔히 관찰되며, 이는 유전체의 안정성 유지 등에 중요한 역할을 하는 것으로 보고 있습니다.

Gene silence: 항상 발현 유전자들의 활성을 반영구적으로 정지시켜야 할 필요가 있을 때, 그들 프로모터의 CpG에 메틸화가 일어나며, CpG 부위 거의 모두가 메틸화되어 버리면 유전자의 활성은 완전히 멈추게 되며, 이러한 경우를 유전자 침묵(gene silence)이라고 합니다.

CpG island의 메틸화와 암 발생: 생식계열 세포 즉 정자나 난자 유전체의 CpG island는 대체로 메틸화가 되어 있지 않습니다. 하지만 수정 후 배아 발달과정을 진행하는 체세포에서는 CpG island를 가진 유전자 일부가 메틸화가 됩니다. 이는 정상 배아 발달이나 세포분화에 필수적입니다. 암 발생의 경우에서도 이를 억제하는 유전자(tumor suppressor genes)의 CpG 부위에 메틸화가 일어나면 유전자는 silence 상태가 되어 무작위적으로 발생하는 암을 막지 못하게 되어 문제가 될 수 있습니다.


Introduction

자가면역 위염(autoimmune gastritis, AIG)은 위 산분비선 점막(oxyntic mucosa)을 침범하는 질환으로, 중증의 점막 위축을 초래한다[1-3]. AIG의 염증은 체부(corpus)와 저부(fundus) 샘에 국한되며, 전정부(antrum)는 침범하지 않는데, 이는 점막 위축이 전정부에서 시작되어 확산되는 헬리코박터 파일로리(Helicobacter pylori, H. pylori) 연관 위염(HPG)과 비교할 때 독특한 특징이다.

위내시경 검사항벽세포 항체(anti-parietal cell antibodies, PCA)의 광범위한 사용 이후, AIG는 점차 유병률이 증가하는 질환으로 인식되었으며, 일반 인구의 0.5–9.5%를 차지하는 것으로 보고되고 있다[3]. 이는 대상자 모집 환경에 따라 차이를 보인다. 조직학적으로 AIG는 벽세포의 파괴와 함께, 크로모그라닌(chromogranin) 및 시냅토피신(synaptophysin)을 발현하는 신경내분비 세포의 과형성이 존재하는 것이 특징이다[2]. 질병이 진행함에 따라, AIG는 철분 및 비타민 B12 흡수 장애로 인한 악성 빈혈(pernicious anemia), 신경내분비종양, 그리고 선암종을 유발한다[2, 3].

특히, AIG 환자에서 위암 발생 위험은 지난 10년간 큰 관심을 받아왔으며[4-6], H. pylori 감염 없이 AIG만 있는 경우의 위암 위험은 HPG 환자에서의 위험보다 더 낮은 것으로 보인다[3].

AIG의 중요성이 증가하고 있음에도 불구하고, 다양한 암에서 원인적으로 관여하는 것으로 알려진 유전자 돌연변이비정상적 DNA 메틸화[7-10]에 대한 보고는 AIG 위점막이나 AIG 관련 위암에서 아직 없다. 반면, H. pylori에 감염된 환자들위점막에서 DNA 메틸화 수준이 증가되어 있으며, 이러한 증가된 DNA 메틸화 수준은 암 발생 위험과 연관되어 있는 것으로 알려져 있다[11-15].

기전적으로, NF-κB 활성 증가로 인한 EZH2 발현 감소와, 일산화질소(nitric oxide) 노출로 인한 DNMT 활성 증가에 동시에 장기간 노출되는 것비정상적 DNA 메틸화를 유도하는 데 중요하다는 점이 밝혀졌다[16. Takeshima H, Niwa T, Yamashita S, et al. TET repression and increased DNMT activity synergistically induce aberrant DNA methylation. J Clin Invest. 2020;130:5370-9.]. 이러한 조건들은 AIG에서도 존재할 수 있으나, AIG 환자의 위점막에서 실제로 비정상적 DNA 메틸화가 나타나는지는 알려져 있지 않다.

본 연구에서는 H. pylori 감염이 없는 AIG에 의해 위점막에서 DNA 메틸화가 유도되는지를 규명하고자 하였다. 이를 위해 H. pylori 감염이 없는 AIG 환자의 위점막 검체를 수집하였으며, 중첩된 H. pylori 감염의 빈도에 대해서는 논란이 있으나[17, 18], 이를 HPG 환자의 검체 어떠한 염증도 없는 정상 위점막 검체와 비교하였다. 또한 위점막에서의 염증 반응이 갖는 잠재적 역할도 함께 탐색하였다.


Methods 

Study design and tissue sample collection (Multicenter observational study, University Hospital Medical Network (UMIN) 000039528)

- AIG (APCA 양성) witout H. pylori (anti-H. pylori antibody 측정)

- H. pylori associated gastritis (HPG)

- Healthy control

로 구분하였으며, gastrectomy를 받았거나 H. pylori eradication을 받은 환자는 제외하였습니다. AIG 환자의 serum gastrin levels은 모두 > 1000 pg/ml 이였으며, endoscopy 에서 AIG과 HPG group 모두 opent type Kimura-Takemoto classification (AIG는 모두 O-III) 을 보이고 있었고, 조직검사는 greater curvature in the middle corpus 에서 시행하였습니다.

Figure 1. Representative cases and flowchart of the study. 

a. Representative cases with autoimmune gastritis (AIG) and H. pylori associated gastritis (HPG). Endoscopic view of gastric body and antrum, and H&E staining of gastric body (x 100). 

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b. Flow chart of the study UMIN000039528. From March 2020 to November 2021, a total of 48 people were enrolled. Eleven people were excluded due to insufficient clinical data for diagnosis, and 12 people with AIG without H. pylori infection, 14 with HPG, and 10 healthy volunteers were included. 11 AIG samples, 9 HPG samples, and 4 normal samples were selected for genome-wide DNA methylation analysis. 8 of each of the AIG samples, HPG samples, and normal samples were used for quantitative RT-PCR.
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Table S1. Characteristics of people enrolled in sutdy UMIN000039528.

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Data acquisition from DNA methylation array

Methylation levels were prsented by a β value: 0 (unmethylated), 1 (fully methylated)

Estimation and corredction of leukocyte fractions

Estimation and correction of leukocyte fractions (3 leukocyte groups)

: T cells (CD4+, CD8+ T cells, CD56+ NK cells)

: B cells (CD19+)

: Monocytes/granulocytes (CD14+ monocytes, neutrophils, eosinophil)

3 groups에서 methylated CpG sites를 selection 하였고, fractions을 계산하였습니다. 

Informatics of DNA methylation analysis

총 439,031 probes에서 Transcription start sites (TSSs)와 CpG islands (CGIs)에 대한 locations에 따라 probes를 collection 하였습니다. 

Promotor CpG island에서 genomic block의 CpG sites를 분석하였으며, CDKN2A (p16)를 확인하기 위해 TSS의 genomic block을 바로 downstream 시켜서 분석하였습니다 (TSS200에 위치하는 genomic block이 없었기 떄문).

Gene ontology analysis (GSEA v4.1.0 & DAVID)

Quntitative real-time PCR (expresstion levels of inflammation-related genes)


결론을 살펴 보겠습니다. 

AIG displayed unique methylation profiles against HPG

* DNA methylation (CpG sites, (P < 0.05), infiltrating leukocytes 포함)

AIG: Hypermethylated (256,440), Hypomethylated (188,276) / HPG: Hypermethylated (283,295), Hypomethylated (202,303)

* DNA methylation (CpG sites, (P < 0.05), infiltrating leukocytes 제거)

AIG: Hypermethylated (122,444), Hypomethylated (87,241) / HPG: Hypermethylated (135,671), Hypomethylated (102,022)

AIG와 HPG의 samples 중에서 가장 높은 SD를 가진 20,000 CpG sites (gastric cancer 포함)은 Nromal 과 비교하여 비정상적인 DNA methylation을 보였습니다 (Fig. 2a. Left). Leukocyte contamination으로 인한 영향을 제거한 후 DNA methylation은 AIG와 HPG에서 서로 차이를 보였습니다 (Fig. 2a. Right). AIG와 HPG사의 관계를 비교해 보았을 때, gastric cancer samples에서 증가된 DNA methylation 부위에 서로간 차이가 있었습니다 (Fig. S1a). 

Leukocyte fractions을 살펴보면, T cell infiltrationAIG와 HPG samples이 Normal 보다 높았고, monocyte/granulocyte와 B-cell infiltration은 AIG 보다 HPG에서 높게 나타나서  (mean: 4.9% and 16.0% vs. 1.8% and 9.1%, P=0.01 and <0.01; Fig. 2b), HPG samples에서 monocyte/granulocyte와 B-cell infiltration의 정도가 stronger methylation induction과 관련이 있다고 볼 수 있습니다.

Figure2. Results of genome-wide DNA methylation analysis among the AIG (n = 11), HPG (n = 9), and normal samples (n = 4), including the samples with gastric cancer. 

(a) Unsupervised hierarchical cluster analysis of methylation levels of the three groups of samples. β values of the 20,000 CpG sites with the highest standard deviation (SD) in overall CpG sites were used. Before correction of leucocyte fractions (left), the AIG and HPG samples were not clearly separated. After correction (right), the AIG samples presented unique methylation profiles against the HPG samples. 

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(b) Leucocyte fractions in the samples. Monocyte/granulocyte and B-cell infiltration was prominent in the HPG samples. Both AIG and HPG samples showed increased infiltration of T cells, compared with the normal samples. *P < 0.05, †P < 0.01
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Figure S1. Results of genome-wide DNA methylation analysis among the AIG (n=11), HPG (n=9), and normal samples (n=4), including the samples with gastric cancer. 

(a) Unsupervised hierarchical cluster analysis of methylation levels of AIG and HPG samples after correction of leucocyte fractions. β values of the 20,000 CpG sites with the highest standard deviation (SD) in overall CpG sites were used. The sample(s) with gastric cancer were clustered separately with unique methylation patterns compared with the samples without gastric cancer, and a cluster of CpG sites (shown by a yellow rectangle) had increased DNA methylation.

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(b) Leucocyte fractions in the samples. The fractions of the three leucocyte groups (T cells, B cells, and monocytes/granulocytes) were calculated based upon their specific methylation patterns.

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AIG showed weaker metylation induction than HPG

Figure 3. The weaker induction of aberrant DNA methylation by AIG than by HPG. 

(a) Scatter plot analysis using the methylation levels in overall CpG sites and in promoter CpG islands. Both the AIG (n = 11) and HPG (n = 9) samples showed aberrant DNA methylation, compared with the normal samples (n = 4) (left). Comparison between the AIG and HPG samples showed that AlG-induced methylation, but less than HPG (right).

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(b) Volcano plot analysis using the methylation levels of genomic blocks in promoter CpG islands. The number of genomic blocks with large Ap values (> 0.05) and small P values (-1og10(P values) > 1.301) greatly increased both in the AIG and HPG samples compared with the normal samples. Moreover, the number of genomic blocks more methylated was remarkably higher in the HPG samples than in the AIG samples. 1752e08dddea3.png

Figure S2. The weaker induction of aberrant DNA methylation by AIG than by HPG. 

(a) Scatter plot analysis before correction of leucocyte fractions. The methylation levels in overall CpG sites and in promoter CpG islands were analyzed between the AIG (n=11), HPG (n=9), and normal samples (n=4). Both the AIG and HPG samples showed aberrant DNA methylation, compared with the normal samples (left). Comparison between the AIG and HPG samples showed that HPG further induced methylation upon AIG (right).

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(b) Volcano plot analysis before correction of leucocyte fractions. The number of genomic blocks with large Δβ values (≥ 0.05) and small P values (–log10(P values) > 1.301) greatly increased both in the AIG and HPG samples compared with the normal samples. Moreover, the number of genomic blocks more methylated was remarkably higher in the HPG samples than in the AIG samples.

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Driver genes were hypermethylation in AIG, but more so in HPG

4가지 Tumor-suppressor genes의 methylation levels을 비교하였습니다. 

* CDKN2A (p16): methylated in gastric cancer (higher AIG < HPG)

* CDH1 (E-cadherin): inactivation is associated with diffuse-type gastric cancer (higher AIG < HPG)

* IGFBP7 & MIR34B: p53 pathway (higher AIG < HPG)

* DKK3 & SFRP1: negative regulator genes (higher AIG < HPG)

* MLH1: mismatch repair genes (little methylation)

--> AIG samples 에서 (HPG에서는 보다 더) cancer driver genes의 methylatio이 높다는 것이고, AIG는 상대적으로 HPG보다 낮은 carcinogenic potential을 갖는 다는 것입니다. 

Figure 4. The DNA methylation levels of cancer driver genes among the AIG (n = l1), HPG (n = 9), and normal samples (n = 4) after correction of leucocyte fractions. (a) CDKN2A was highly methylated in the AIG samples, but more so in the HPG samples. (b) CDH1 was highly methylated in the AIG samples, but more so in the HPG samples. (c) IGFBP7 and MIR34B showed high methylation levels in the AIG samples, but more so in the HPG samples. (d) DKK3 and SFRP1 showed high methylation levels in the AIG samples, but more so in the HPG samples. (e) MLH1 showed little methylation in any types of the samples. †P < 0.01, n.s. not significant
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Inflammation-related genes were more upregulated in HPG and in AIG

4가지 inflammation-related genes의 methylation levels을 비교하였습니다.

TNFα, IL1B, NOS2: DNA methylation induction에 관여하는 물질들입니다

* TNFα: secreted by all types of leucocytes (highly expressed in the AIG & HPG)

* IL1B, IL8: secreted by macrophage (induce neutrophil migration) (highly expressed in the HPG: likely reflecting the stronger monocyte/granulocyte infiltration)

* NOS2: (highly expressed in the AIG (AIG vs. HPG: no difference)

Figure 5. The expression levels of four infl ammation-related genes among the AIG (n = 8), IIPG (n = 8), and normal samples (n = 8). IL1B and IL8 showed remarkably high expression levels in the HPG samples. TNFα and NOS2 showed high expression levels in the AIG samples, but no significant difference between the AIG and HPG samples. *P < 0.05, †P < 0.01, n.s. not significant 

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Discussion

본 연구에서 우리는 자가면역 위염(AIG)위 점막에서 비정상적인 DNA 메틸화를 유도하며, AIG 검체가 헬리코박터 파일로리 연관 위염(HPG) 검체비교하여 독특한 메틸화 프로파일을 보인다는 것을 규명하였다. 이는 AIG에 의해 유도된 후성유전학적 변화를 보여준 최초의 보고이며, AIG에 의한 위암 발생에 후성유전학적 기전이 관여함을 시사한다. 우리는 이전 연구에서 HPG에 의해 유발된 염증 과정이 강력하게 비정상적 DNA 메틸화를 유도한다는 것입증하였고[37], 이러한 후성유전학적 변화가 위암 발생에 중요하다는 점을 우리 연구팀과 다른 연구자들이 보여주었다[1-15].

이에 따라 우리는 AIG 검체HPG 검체 간비정상적 DNA 메틸화 정도를 비교하였고, AIG 검체에서 더 적은 비정상적 DNA 메틸화가 관찰되었다. AIG에 의한 비정상적 DNA 메틸화 유도가 더 약하다는 점은, H. pylori 감염이 없는 AIG 환자에서 위암 발생률이 HPG 환자보다 낮다는 사실과도 일치하였다[3].

프로모터 CpG 섬 메틸화를 보인 유전자들을 이용한 유전자 온톨로지 분석에서, AIG 검체는 HPG 검체보다 유전자 집합 또는 용어의 풍부도가 더 낮았다. 또한 GSEA 분석에서 대장암에서 메틸화되는 것으로 보고된 유전자 집합[38]은 HPG 검체에서만 관찰되었으며, DAVID 분석에서는 WNT 신호전달과 같은 암 관련 신호 경로와 연관된 용어들HPG 검체에서만 나타났다. 위암에서는 암 관련 경로들이 드라이버 유전자 메틸화에 의해 자주 영향을 받는 것으로 알려져 있다[26, 27, 39]. 본 연구 검체에서 이들 드라이버 유전자 대부분약 20% 수준의 DNA 메틸화 값을 보였으며, 따라서 벌크 샘플 수준에서 유전자 발현의 차이를 관찰하기는 어렵다고 판단하였다. 또한 프로모터 CpG 섬의 비정상적 DNA 메틸화에 의한 유전자 침묵화 이미 잘 확립된 사실이다[40].

주목할 점은, 세포주기, 세포접착, p53, WNT 음성 조절에 관여하는 다수의 종양억제 유전자들AIG 검체에서도 메틸화되어 있었으나, 그 정도는 HPG 검체보다 낮았다는 것이다. 이러한 결과 역시 H. pylori 감염이 없는 AIG 환자에서 위암 발생률이 더 낮다는 사실과 일치하였다. 또한 CDH1의 낮은 메틸화 유도AIG 환자에서 미만형 위암의 낮은 발생률과도 부합하였다[41].

AIG 단독 환자에서의 위암은 드물기 때문에, 본 연구에서는 단 1개의 검체만 확보할 수 있었다. 그럼에도 불구하고, 이 검체를 위암이 없는 다른 검체들과 비교한 결과, 암이 동반된 검체에서 적어도 특정 클러스터의 좌위(loci)에서는 더 높은 수준의 비정상적 DNA 메틸화가 존재할 가능성이 시사되었다. HPG의 경우에는 암 환자에서 메틸화 수준이 증가되어 있다는 점이 반복적으로 관찰되어 왔으며[12, 13], 본 연구에서도 이를 확인하였다.

AIG에 의해 비정상적 DNA 메틸화가 유도되는 기전을 탐색하기 위해, 우리는 메틸화 유도에 관여하는 것으로 알려진 염증 관련 유전자 3종[16]의 발현 수준을 분석하였다. AIG에서 IL1BIL8의 발현HPG보다 낮았던 점은, 메틸화 분석에서 단핵구/과립구 분율이 더 작았다는 사실과도 일치하였다. 이러한 관찰은 AIG와 HPG의 알려진 조직학적 변화와도 부합하는데, 두 질환 모두 T세포와 B세포의 침윤을 보이지만, 대식세포 증가공격적인 호중구 침윤HPG의 특징이다[35, 36, 42, 43]. 대식세포와 호중구의 중요성DNA 메틸화 유도에서 T세포B세포필수적이지 않다는 점과도 일치하였다[44]. TNFα와 NOS2는 AIG 검체에서 높은 발현을 보였으나, AIG와 HPG 간 유의한 차이는 없었다. 종합하면, 대식세포 유도 염증 DNA 메틸화 유도의 주요 기전으로 보인다.

본 연구에는 몇 가지 한계와 향후 연구의 필요성이 있다. 첫째, 표본 수가 적어 암 드라이버 유전자를 포함한 차등 메틸화 영역의 평가에서 통계적 검정력이 제한되었다. 둘째, 표본 수가 적어 AIG 검체, HPG 검체 및 정상 검체 간 변이성 분석의 검정력에도 영향을 미쳤을 가능성이 있다. 셋째, 상피 내에도 백혈구가 존재하기 때문에, 백혈구 분율 보정은 정보학적 방법을 이용해 수행할 수밖에 없었다.

향후 연구로서, AIG에 HPG가 중첩될 경우 DNA 메틸화 유도에 미치는 영향은 매우 흥미로운 주제이다. 이러한 중첩은 위암 발생률을 높일 수 있는데, 이는 과거 HPG 발생률이 매우 높았던 일본에서 AIG 환자에서 위암 발생률이 높게 보고된 사실과도 부합한다[6].



이번 연구들을 살펴보면, AIG의 경우 위 점막에서 비 정상적인 DNA 메틸화가 일어난다는 것이고, HPG와 비교하여 독립적인 methylation profiles이 존재한다는 것입니다. 그리고, AIG-induced gastric cancer에 epigenetic metahnism이 작용한다는 것을 의미하기도 합니다. 하지만, AIG는 HPG 보다비 정상적인 DNA 메틸화가 덜 일어나는 것 같고, H. pylori infection이 없는 AIG에서는 동반된 AIG 보다 더 낮은 gastric cancer incidence를 보일 수 있다는 것입니다. 또한, DNA 메틸화를 유도하는 것에 있어서 T 또는 B cells 보다 macrophages와 neutrophils이 더 중요하다는 것이고, macrophage-induced inflammation이 DNA 메틸화 유도의 main mechanism 이라는 것을 알 수 있었습니다. 앞으로 AIG환자에서 HPG가 함께 동반 되었을 때 발생하는 DNA 메틸화 유도에 미치는 영향gastric cancer의 높은 incidence 연관성 등이 연구되어져야 할 것 같습니다. 


Abstract 

Background Autoimmune gastritis (AIG) is a chronic inflammatory condition in gastric mucosa and is associated with increased cancer risk, though not as high as that by Helicobacter pylori (H. pylori)-associated gastritis (HPG), Although aberrant DNA methylation is induced by HPG and the level correlates with the risk of gastric cancer, DNA methylation induction by AIG is unknown. 

Methods Gastric mucosa samples from the corpus were collected from 12 people with AIG without H. pylori infection, 10 people with IIPG, and eight healthy volunteers. Genome-wide DNA methylation analysis was conducted using Infinium Methylation EPIC array. Gene expression was analyzed by quantitative RT-PCR. 

Results The AIG samples had extensive aberrant DNA methylation but presented unique methylation profiles against the HPG samples after correction of leucocyte fractions. Comparison between the AIG and HPG samples showed that AIG induced methylation, but less than HPG, in overall CpG sites and also in promoter CpG islands. Promoter CpG islands of tumor-suppressor genes in the pathway of cell cycle, cell adhesion, p53, and WNT were highly methylated in the AIG samples, but more so in the HPG samples. The expression levels of ILIB and, Il3, secreted by macrophage, were significantly lower in the AIG samples than in the HPG samples, suggesting that a difference in inflammatory response affected the degree and pattems of aberrant DNA methylation. 

Conclusions AIG induced aberrant DNA methylation in gastric mucosa. However, the degree of DNA methylation was less than that by HPG, which reflected carcinogenic risk.

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